天津津腾实验设备有限公司
1 引 言
如同在地球上一样，微生物在飞船上是广泛存在的。俄罗斯载人航天的经验证明随着飞行时间的延长，飞船中微生物的危害会越来越严重 [1-3] 。在太空中微生物的危害对人体而言主要是影响乘组健康，作为病原体引起感染、过敏 [4] ；同时微生物能释放有害气体，成为间接的致病源；对飞船系统而言，一些生物降解类微生物能够降解飞船材料、腐蚀仪器仪表，影响飞船硬件设备稳定性致使仪器及系统失灵等 [5] 。因此微生物快速鉴定技术对于评估飞船环境意义重大。
目前，国际空间站主要使用传统培养法在轨进行菌落计数，而更细致的分类鉴定受到座舱条件的限制只能在地面进行。多年来 NASA 一直在寻求在轨免培养微生物快速鉴定方法 [6] 。一方面免培养法较培养法能快速、准确、灵敏地反映环境中微生物的多样性，在微生物检测和多样性研究研究中得到了广泛的应用 [7] ；另一方面，培养法可能会低估微生物种群的数量，因为某些微生物具有非培养存活能力，或需要特殊培养条件 [8，9] 。尽管如此，免培养法在空气微生物多样性研究领域尚未得到广泛应用，其主要原因在于没有有效的适于免培养应用的空气微生物采样及元基因组 DNA 提取方法。
本文优化了微孔滤膜采集空气微生物条件，建立了元基因组 DNA 快速提取方法，并通过革兰氏阴性菌-大肠杆菌和革兰氏阳性菌-金黄色葡萄球菌验证，所得 DNA 满足 PCR 扩增需要，为空气微生物免培养快速鉴定奠定了基础。
2 材料和方法
2.1 材料
2.1.1 菌种
大肠杆菌（Escherichia coli ）和金黄色葡萄球菌Staphylococcus aureus），两者均为实验室保藏菌种。
2.1.2 仪器
生物安全柜（BHC-1300IIA2）、台式高速冷冻离心机（CT14RD）、循环水多用真空泵（SHB-3，10L/min）、温度梯度 PCR 仪、智能蒸汽灭菌器（VPL-A5032）、过滤式空气采样器、微孔滤膜（0.22μm 和0.45μm）。
2.1.3 试剂
TE（100mmol/L Tris.Cl，10mmol/L EDTA，pH8.0）、试剂盒 1：土壤基因组 DNA 快速提取试剂盒（离心柱型）、试剂盒 2：超纯土壤基因组 DNA 提取试剂盒、试剂盒 3：细菌、真菌 DNA 快速提取试剂盒、DNA 快速提取液 （1% Triton X-100，0.5% Tween 20，10mMTris·Cl （pH 8.0））、PCR 扩增体系（2.5U/μL Taq DNAPolymerase、10×Taq Buffer、2.5mmol/L dNTPs、去离子
双蒸水、20μmol/L 引物）、溶葡萄球菌酶。
2.2 方法
2.2.1 空气样品元基因组 DNA 提取方法
（1）样品制备
采用掺菌法，以确保样品中含有一定数量的微生物。具体方法如下：抽滤 250L 空气，将先其中的悬浮物采集在 0.22μm 微孔滤膜上，用 1mL TE 缓冲液洗脱滤膜上采集的样品，121℃灭菌 30min 后加入1.3×10 7 cfu 的大肠杆菌和 2.7×10 7 cfu 的金黄色葡萄球菌，10000rpm 离心 5min，弃上清，沉淀用于 DNA提取。
（2）元基因组 DNA 提取
采用试剂盒 1、试剂盒 2、试剂盒 3（提取方法参说明书）和 DNA 快速提取液进行 DNA 提取。DNA快速提取液提取方法为：在样品中加入 300μL 的提取液，100℃煮沸 5min，10000rpm 离心 5min，得上清为元基因组 DNA，用 0.7%琼脂糖凝胶电泳检测。
（3）元基因组 DNA 检验
得到的元基因组 DNA 采用紫外分光光度计测定 OD 260nm ，计算得 DNA 得率，并分别用大肠杆菌特异 引 物 （Alr1:5’-CTGGAAGAGGCTAGCCTGGAC－GAG-3’和 Alr2 :5’-AAAATCGGCACC GGTGGAGC－GATC-3’）[10]和金黄色萄球菌特异引物（nucF:
5' -GCGATTGAT GGTGATACGGTI-3' 和 nucR:5'-AGCCAAGCCTT GACGAACTAAAGC -3'） [11] 进 行PCR 扩增，进一步比较不同实验方法提取 DNA 的效果。
2.2.2 空气样品采集方法
将过滤式空气采样器通过真空胶管链接于SHB-3 循环水多用真空抽气泵（抽气量 10L/min），根据滤膜孔径和抽滤时间设计如下采集方案（表 1）：样品采集结束后，用 TE 缓冲液将采集物从微孔滤膜上洗脱下来，然后用 1.2.1.2 确定的方法提取元基因组 DNA，进行琼脂糖凝胶电泳检测，并采用细菌16S rDNA 通用引物 27F（5’- AGAGTTTGATCMTG－GCTCAG-3’）和 1525R（5’-AGAAAGGAGGTGWTC－CARCC -3’）[12] 进行 PCR 扩增，检验提取 DNA 的质量。25μl 扩增体系中加 1μl DNA 模板，2U Taq DNA聚合酶，其它为常规用量。扩增程序为：95℃预变性4min，95℃变性 45s，55℃退火 90s，72℃延伸 1min，72℃后延伸 5min，30 循环。扩增结束后，0.7%琼脂糖凝胶电泳进行检测。
3 结 果
3.1 样品 DNA 提取方法的确定
根据 OD 260nm 测定结果计算得到的采用掺菌法各方法提取 DNA 的得率见表 2，结果表明：试剂盒 1DNA 提取得率最高，且重现性好，试剂盒 2 和快速DNA 提取液 DNA 得率明显低于试剂盒 1，而试剂盒3 DNA 得率最低。根据元基因组 DNA 琼脂糖凝胶电泳检测结果（图 1）：各方法提取得到的 DNA 分子量都在 20kb 以上，调带较为整齐。采用所提的元基因组 DNA 进行大肠杆菌和金黄色葡萄球菌特异引物扩增的结果如图 2 所示。
总体来看，除试剂盒 3 外，其它三种方法得到的 DNA 都得到了大肠杆菌的特异扩增产物片段（约 370bp），且试剂盒 1 提取得到的 DNA 的扩增效果最好；虽然试剂盒 1、试剂盒 2 提取的 DNA 样品得到了金黄色葡萄球菌特异扩增片段（约 290bp），但是扩增效果较差。说明即使是试剂盒 1，对金黄色葡萄球菌 DNA 的提取效果也较差。因此，以效果最好的试剂盒 1 提取法为基础，对实验方法进行了如下改进：（1）在第 2 步 37℃水浴时加入 12U 的溶葡萄球
菌酶，并将水浴时间和第 3 步 65℃水浴时间延长到30min～60min。
（2）将使用说明中第 9 步改为：加入二倍体积的冰乙醇，充分混匀，10000rpm 离心 10min，小心倒掉上层悬液；加入适量体积的 70%乙醇，轻轻弹离心管的底部使 DNA 悬浮后，10000rpm 离心 10min，弃乙醇，晾干；最后用 30μl 洗脱缓冲液 EB 溶解沉淀即可。
实验方法改进前后 DNA 特异引物扩增结果比较见图 3，显然改进提取方法后大肠杆菌和金黄色葡萄球菌特异扩增效率均有所提高，尤其是金黄色葡萄球菌的扩增效率改善明显。
3.2 不同采样方法效果的比较
上述结果说明改进的提取方法对革兰氏阳性和革兰氏阴性细菌都适用，因此以改进的试剂盒 1 提取方法为标准，评价不同采样方法所得样品是否满足元基因组 DNA 提取及 PCR 扩增要求。检测结果如图 4 所示：结果显示：用两种孔径的微孔滤膜采集 30min所得样品均不能提取得到满足普通 PCR 检测所需的 DNA；而用两种孔径的微孔滤膜采集 45min 和60min 所得样品均可提取得到满足普通 PCR 要求的DNA，但总体上 0.22μm 微孔滤膜采集所得样品提取DNA 后扩增效果要比 0.45μm 微孔滤膜好，并且采集时间在 60min 时所得 DNA 扩增效率最高。说明采集 30min 时所得样品中微生物数量太少，尚不足以提取得到满足普通 PCR 检测的 DNA，采集 45min 时所得样品中微生物数量虽已可提取得到满足普通PCR 检测灵敏度要求量的 DNA。但若适当延长采样时间，增加采集的空气体积，则对于分析空气中低丰度的微生物更合适些。
4 讨 论
目前空气微生物样品采集多采用撞击法或自然沉降法，这两种方法均以培养为基础检测微生物 [13] 。在飞船上，环境微生物检测需快速、敏感，而传统的培养法无法满足此要求。免培养法能达到快速、高效、准确检测微生物的目的，已成为研究各类环境微生物多样性的重要方法，但是在空气微生物多样性研究领域尚未得到广泛应用，其主要原因在于没有有效的适于免培养应用的空气微生物采样及元基因组 DNA 提取方法 [14-16] 。
本研究发现与其他试剂比较，试剂盒 1 对于元基因组 DNA 的提取效率最高。对提取液的组成、原理和方法进行了分析，发现快速提取液法通过煮沸去除核酸内切酶，但有资料显示，有一些菌株含有的核酸内切酶靠煮沸是无法完全去除的，如含有 en－dA+基因型的菌株；此外，试剂盒 2 和试剂盒 3 所采用的方法在细胞破壁后，DNA 与核酸内切酶仍有充分接触时间，DNA 有可能被降解；而离心柱分离通过吸附、快速漂洗和离心，减小了核酸内切酶与 DNA作用的面积和时间，并能有效的去除细胞代谢产物、蛋白等杂质，最后所得到的洗脱的基因组 DNA 纯度较高。
使用提取模板扩增特异片段时发现即使是试剂盒 1，对金黄色葡萄球菌 DNA 的扩增效果也较差。这可能与革兰氏阳性菌细胞壁结构影响提取效果有关。因此在改进方法中，加入了溶葡萄球菌酶和二倍体积的冰乙醇促进细菌壁的裂解，至此，改进的提取方法对革兰氏阳性和革兰氏阴性细菌均适用。
本研究建立了可用于免培养研究的室内空气微生物采集及 DNA 提取方法，所得 DNA 样品满足普通 PCR 检测需要，为空气样品微生物的免培养研究奠定了方法学基础。
